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涡旋振荡器使用于酵母微粒体的条件优化

返回列表 来源:未知 发布日期:2019-08-15 09:57【

基因重组酵母是一种利用基因重组技术,将外源 目的基因转录至酵母细胞中,使之表达相应蛋白的酵 母。重组人代谢酶酵母能够表达人肝微粒中不同亚 型的 CYP450 酶,与其他表达系统(如大肠埃希菌、 哺乳动物细胞和昆虫细胞等)相比,具有重组酶表 达量和催化活性相对较高、生产周期短以及适合于大 批量制备药物代谢物等优点,因而具有突出优势。 Dragan 等通过重组人 CYP2C9 酵母全细胞反应体 系,制备了双氯芬酸的代谢物,但是不同药物的化学 结构及理化性质各不相同, 因此利用重组人 CYP450 酵母全细胞反应体系进行不同药物代谢途径及代谢 物的筛选仍存在一定困难。



1 材料与方法

1.1 仪器与试剂

1.1.1 仪器


LC-2010AHT 高效液相色谱仪(日本岛津公司); 涡旋振荡器 XW-80A(海门市其林贝尔仪器制造有限 公司);玻璃珠(美国 Biospec 公司,直径为 0.5 mm); 48 孔板(无锡耐思生物科技有限公司)。



1.1.2 试剂

重组人 CYP2C9 酵母、 未转染酵母和 4-羟基双 氯芬酸(纯度≥98.0%)由南京珼瑞斯生物医药科技有 限 公 司 提 供 。 还 原 型 酰 胺 腺 嘌 呤 二 核 苷 酸 磷 酸 (NADPH)再生系统试剂购自汇智泰康生物技术(北 京)有限公司。 Lowry 蛋白浓度测定试剂盒、Yeast Nitrogen Base W/O Amino acids 和 PMSF 购自北京索莱 宝科技有限公司。 双氯芬酸标准品(纯度≥98%)和LHistidine 购自东京化成工业株式会社(TCI)。 Leu Minus media 购自北京泛基诺科技有限公司。 Yeast Extract 和 Tryptone 购自英国 Oxoid 公司。 葡萄糖和 DL二硫苏糖醇(DTT)购自上海阿拉丁生化科技股份有限 公司。 三氟乙酸(分析纯)和二水合 EDTA 二钠购自南 京化学试剂股份有限公司。 蔗糖购自西陇科学股份 有限公司。 琼脂粉购自国药集团化学试剂有限公司。



1.2 方法

1.2.1 玻璃珠预处理


玻璃珠用浓盐酸浸泡 24 h,滤去浓盐酸,用去离 子水洗涤至中性,在 60℃烘箱中干燥 16 h,于 4℃保 存。 使用前,将预处理后的玻璃珠置于冰上备用。



1.2.2 未转染酵母菌和重组人CYP2C9 酵母菌的培养

1.2.2.1 SD-His 培养基(g/L)


Yeast Nitrogen Base W/O Amino acids 6.7,L-Histidine 0.02,葡萄糖 20,琼脂粉 20(制备固体培养基时添加)。 使用前,于 115℃灭菌 30 min,葡萄糖配制成 20%溶液单独灭菌。



1.2.2.2 YPD 培养基(g/L)

Yeast Extract 10,Tryptone 20, 葡萄糖 20,琼脂粉 20(制备固体培养基时添加)。 使用 前,于 115℃灭菌 30 min,葡萄糖配制成 20%溶液单 独灭菌。



1.2.2.3 未转染酵母菌培养流程

将甘油中保存的未 转染酵母菌接种至 YPD 固体培养基上, 放置生化培 养箱中培养 3 d(30℃)。 3 d 后取 16 个单颗菌落(直 径≥2 mm), 转移至含有 1400 ml YPD 培养基的 2 L 三角培养瓶中,培养 3 d(30℃,200 r/min)。 离心称重, 按照菌重与培养基体积比 1∶1 加入 YPD 培养基,于 4℃保存备用。



1.2.2.4 重组人 CYP2C9 酵母培养流程

将甘油中保存 的重组人 CYP2C9 酵母菌接种至 SD-His 固体培养基 上,放置培养箱中培养 5 d(30℃)。5 d 后取 16 个单颗 菌落(直径≥2 mm),转移到含有 200 ml SD-His 液体 培养基的 500 ml 三角培养瓶中,培养 40~48 h(30℃、 200 r/min)。 40~48 h 后将培养基全部转移至 2 L 的三 角培养瓶中, 并加入 1400 ml YPD 培养基, 培养 2 d (30℃、200 r/min)。 离心称重,按照菌重与培养基体积 比 1∶1 加入 SD-His 培养基,于 4℃保存备用。



1.2.3 未转染酵母微粒体和重组人 CYP2C9 酵母微粒 体的制备

1.2.3.1 酵母微粒体缓冲液的制备


10%蔗糖,0.1 mol/L pH 7.4 磷 酸 钾 缓 冲 液 ,0.1 mmol/L DTT,0.1 mmol/L EDTA(临用前加入 1 mmol/L PMSF)。



1.2.3.2 未转染酵母微粒体的制备

取所培养未转染 酵母菌菌液 5 ml(约含酵母菌 2.5 g),离心除去 YPD培养基,按菌重与缓冲液体积比 1∶1 加入酵母微粒体 缓冲液,涡旋使之充分混悬。将混悬液分装入 2 ml EP 管中,使得每个 EP 管中含有 1 ml 混悬液(约含酵母 菌 0.5 g),并分别加入 0.5 g 玻璃珠,在涡旋振荡器上 涡旋振荡 30 次(每次涡旋振荡 30 s,冰上冷却 60 s), 离心(1000 g,10 min)取上清,再次离心(5000 g,1 h) 取 上 清 , 上 清 即 为 未 转 染 酵 母 微 粒 体 混 悬 液。 于-20℃保存。



2 结果

2.1 利用 HPLC 测定酵母微粒体反应体系中双氯芬酸 及其代谢物的含量


CYP2C9 酵母微粒体(制备条件为涡 旋振荡 30 次,0.5 g 玻璃珠)反应 0 h 和 1 h 样品及未 转染酵母微粒体反应 0 h 和 1 h 样品的 HPLC 检测结 果色谱图。 双氯芬酸、代谢物 4-羟基双氯芬酸及内标 卡马西平在“1.2.6”项的 HPLC 色谱条件下分离度良 好,保留时间分别为 11.08 min、5.13 min 和 3.74 min。 仅在重组人 CYP2C9 酵母微粒体反应 1 h 的样 品 HPLC 图谱中发现双氯芬酸代谢物 4-羟基双氯芬 酸的色谱峰,而其他样品的 HPLC 图谱中未 出现此峰(图 1A、1C 和 1D)。



2.2 涡旋振荡次数对重组人

CYP2C9 酵母微粒体蛋白 活性的影响 探讨涡旋振荡次数对所制备微粒体蛋白活性的 影响时,玻璃珠的用量为 0.5 g。 随着涡旋振荡次数的 增加,所制备酵母微粒体蛋白含量呈增加趋势,在涡 旋振荡次数为 50 次时, 蛋白含量趋于稳定, 约为 22.49 mg/ml(图 2A)。 代谢物 4-羟基双氯芬酸的生成 量在涡旋振荡次数为 30 次时最大, 为 1.82 μg ,且单位时间单位蛋白所生成的代谢物量也最大, 为 0.10 μg/[(mg/ml)·h](图 2C),随后都呈下降趋势。



3 讨论

酵母细胞壁厚实,影响胞内外物质的接触,因 此细胞破壁对提高酵母利用率非常重要。 目前常用的 酵母破壁方法有酶解法、超声波破碎法、匀浆破碎 法和玻璃珠破碎法等,其中玻璃珠破碎法具有操 作简单,可以同时处理多个样品,且对酶活力和环境 的损害较小等优点。 Donnell 等比较了玻璃匀浆 器、珠磨机、超声破碎和玻璃珠涡旋振荡等 7 种破碎 荚膜葡萄球菌酵母细胞壁提取锌金属蛋白的方法,结果表明玻璃珠涡旋振荡的方法对提取锌金属蛋白最有利,蛋白变性量最小。 制备重组人代谢酶酵母微粒 体通常也是采用玻璃珠涡旋振荡的方法。 为了保 留较强的蛋白活性,避免微粒体蛋白因长时间涡旋振 荡产热而失活,本研究采用涡旋振荡 30 s,冰上冷却 60 s 的方式,重复多次涡旋振荡。 研究结果显示,所有 不同条件制备的重组人 CYP2C9 酵母微粒体蛋白均 具有一定的活性。





 

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