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乙酰化衍生物在SD大鼠体内药动学研究(VORTEX-5使用

返回列表 来源:未知 发布日期:2019-12-09 09:38【

藤茶[Ampelopsis grossedentata ( Hand. -Mazz. ) W. T. Wang]属葡萄科蛇葡萄属中的一种野生藤本 植物,主要分布于我国长江流域,始载于《茶经》,作 为民间日常饮用茶,其入药记载初见于《草本便 方》: “藤茶叶甘温消渴,诸气鼓胀月活,丹停气肿下 盅毒,利便通肠代茶喝”。研究表明藤茶具有杀 菌消炎、抗氧化、保肝、预防癌症等作用,主要活 性成分为二氢杨梅素( dihydromyricetin,DMY) ,另含 有杨梅素( myricetin,MY) 等其他黄酮类化合物,其 茎叶 DMY 含量可达 30%,近年来研究报导 DMY 和 MY 具有抗炎、抗氧化、抗肿瘤、抗高血压、预防动 脉粥样硬化等药理作用,是极具开发前景的天 然药物成分。

1 材料和试剂

1. 1 仪器

HPLC 系统( 岛津公司,日本) ,AB SCIEX 4000 Q TRAP LC-MS /MS 系统和 Analyst software 1. 6. 1 工作站( AB SCIEX 公司,美国) ,VORTEX-5 旋涡振荡器( 海门市其林贝尔仪器制造有限公司, 中国) ,低温高速冷冻离心机( Sigma 公司,3-18K,德 国) ,超低温冰箱( 三洋公司,日本) 。GH-202 电子 分析天平( AND,日本) 。

1. 2 试药

二氢杨梅素衍生物的合成 3,5,7,3’,4’,5’-六乙酰基二氢杨梅素( 3,5,7,3’,4’,5’- hexaacetyl dihydromyricetin,DMY-1) 与 3,3’,4’,5’- 四乙酰基二氢杨梅素( 3,3’,4’,5’-tetraacetatyl dihydromyricetin,DMY-2) 合成方法详细见课题组的前期研究,简述如下: 藤茶经过提取、分离、纯化 获得 DMY 和 MY。一定量的 DMY 与乙酸酐和高氯 酸在室温下发生反应获得白色固体,将干燥的白色 固体进行重结晶,得到纯度为 84. 3% 的 DMY-1。同 理,一定量 DMY 与乙酸酐和原硼酸发生反应,乙醇 重结晶,得到纯度为 88. 2% 的 DMY-2。 二氢杨梅素对照品 ( 含 量: 98. 0% ,批 号 150507) ,杨 梅 素 对 照 品 ( 含 量: 98. 0% ,批 号 150311) ,异甘草素对照品( Isoliquiritigenin,ISL,含 量: 100. 0% ,批号 140928) 作为检测内标( internal standard,IS) ,均购买于长沙昂诺生物科技有限公 司; 二氢杨梅素原料药( 含量: 98. 0% ,湖南中医药 大学天然药物化学实验室自制) ,杨梅素原料药( 含 量: 98. 0% ,湖南中医药大学天然药物化学实验室自 制) ; DMY-1、DMY-2 为湖南中医药大学天然药物化 学实验室自制,经 HPLC 归一化法分析含量分别为 84. 3% 和88. 2% 。甲醇和乙腈( 色谱纯,Merck,Germany) ,甲 酸 ( 色 谱 纯,ROE scientific inc. ,USA, LOT0J0921) ,纯净水由实验室的纯水仪所制( RODI12AL,AQUA SOLUTIONS ,INC,美国) 。

1. 3 动物

24 只 SD 大鼠,质量 200 ~ 250 g,雌雄 各半,购于湖南省斯莱克景达实验动物有限公司, 许可证号: SCXK( 湘) 2011-0003,饲养于中南大学湘 雅二医院实验动物房,实验单位使用许可证编号: SYXK( 湘) 2012-003。

2 方法与结果

2. 1 色谱与质谱条件

色谱条件: 色谱柱为 Ultimate AQ-C18 ( 3. 0 mm × 100 mm,3. 0 μm) ,Welch Materials; 预柱: SecurityGuardTM Cartridges C18 ( 4 × 3. 0 mm) ,美国菲罗门公司; 流动相 A 为水相: 0. 1% 的 甲酸-水溶液,流动相 B 为有机相: 纯乙腈,梯度洗脱 程序为 10% B( 0. 01 ~ 0. 30 min) ,10 ~ 70% B( 0. 30 ~ 1. 90 min) ,70% B( 1. 90 ~ 3. 50 min) ,70 ~ 10% B ( 3. 50 ~ 3. 70 min) ,10% B( 3. 70 ~ 6. 40 min) ; 流速: 0. 4 mL·min - 1 ( 0. 01 ~ 0. 40 min) ,0. 6 mL·min - 1 ( 0. 50 ~ 6. 10 min) ,0. 4 mL·min - 1 ( 6. 10 ~ 6. 40 min) ; 柱温 45 ℃。

2. 2 标准溶液配置及标准曲线制备

DMY、MY 及 ISL( IS) 对照品分别用纯甲醇溶解配置得到标准储 备液为 800,620,480 μg·mL - 1,放置 - 20 ℃ 冰箱保 存。将空白血浆加入标准储备液配成 DMY 的标准 曲线质量浓度为1. 0,2. 5,5. 0,10. 0,50. 0,200. 0, 800. 0 和 1 200. 0 ng·mL - 1,质控样品质量浓度为 2. 0,60. 0,1 000. 0 ng·mL - 1,MY 的标准曲线质量浓度 为 1. 0,3. 0,6. 0,18. 0,30. 0,60. 0,120. 0 和 150. 0 ng·mL - 1,质控样品浓度为 2. 5,50. 4,132. 0 ng· mL - 1,内标沉淀剂浓度为 14. 4 ng·mL - 1。所得结果 表明 DMY 在浓度为 1. 0 ~ 1 200. 0 ng·mL - 1、MY 在 1. 0 ~ 150. 0 ng·mL - 1 的血浆中的线性关系良好, DMY 和 MY 在血浆中的线性方程分别为: Y = 0. 016 7X + 0. 055 5( r = 0. 999 6) ,Y = 0. 019 8X + 0. 004 32 ( r = 0. 999 2) ,最低定量限均为 1. 0 ng·mL - 1,最低 定量限考察的 RSD 均小于 12. 0% 。

2. 3 样品处理

将血浆样品从 - 70 ℃ 冰箱取出室 温下解冻,涡旋混合30 s,精密吸取30 μL 血浆置1. 5 mL EP 管内,加入 90 μL 内标沉淀剂( ISL 14. 4 ng ·mL - 1 ) ,涡旋振荡 3 min 后,离心 10 min( 15 000 r· min - 1 ) ,取上清液 60 μL 与去离子水 60 μL 混合入 进样瓶,进样 5μL,以内标法定量分析。

3 讨论

DMY、DMY-2、MY 在 ESI 源负离子采集模式下均能获得较高的灵敏度和 高选择性,但是 DMY-1 只能在 ESI 源正离子模式下 才能获得质谱响应,见图 1 所示。DMY、MY、DMY2、ISL 和 DMY-1 的质谱调谐后的离子对分别为 m / z 319. 0 →192. 9、m / z 317. 1 →179. 0、m / z 487. 3 → 403. 2、m / z 255. 0→118. 9 和 m / z 590. 4→489. 3。为 获得最佳灵敏度和峰型,分别比较了甲醇、乙腈与 含不同比例的甲酸、醋酸铵水溶液对待测物进行色 谱分离,结果表明: 水相中只添加0. 1% 甲酸比含有 缓冲盐更能改善色谱峰型。因此本研究最终在水 中加 0. 1% 甲酸作为水相来进行色谱分离。此外, 为了满足同时分析检测这 5 个化合物,采用梯度洗 脱能 够 实 现 快 速 分 离,DMY、MY、DMY-2、IS 和 DMY-1 的保留时间分别是4. 00,4. 26,5. 00,4. 73 和 5. 30 min,总运行时间为 6. 4 min,相比于报道 的进样时间,得到很大的改善,实现了快速分离。



 


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